Approaches to the search for immunological markers of endometriosis and the degree of its prevalence

Krechetova L.V. Krechetova, T. D. Korotkova, E. V. Inviyaeva, L.V. Adamyan
In: Meditsinskiy sovet = Medical Council · 2025 · vol. 19(13) , pp. 227–235 · doi:10.21518/ms2025-261 · W4414102619
article OA: diamond CC0 ⤵ 1 in-corpus citation
🔓 Open OA copy Full text JSON View on OpenAlex View at publisher
⚙ AI-generated summary by claude@2026-06, 2026-06-08 ⓘ

This study analyzed immune cell subpopulations and cytokines in peripheral blood and peritoneal fluid to identify non-invasive markers for endometriosis prevalence and severity.

One-sentence paraphrase of the abstract; not a substitute for reading it. No clinical advice. How this works

⚙ AI-generated deep summary by claude@2026-06, 2026-06-08 · read from full text ⓘ

The paper analyzes immune cell subpopulations and cytokine levels in peripheral blood and peritoneal fluid to identify non-invasive immunological markers of endometriosis and its prevalence stage. Using flow cytometry and a 27-plex cytokine panel, the authors compared women with stage I–II endometriosis (n=20) and stage III–IV (n=28) to a control group without endometriosis (n=19), sampling peripheral blood preoperatively and peritoneal fluid intraoperatively. They report that peripheral blood in endometriosis shows leukocyte/neutrophil increases with lymphocyte decreases, altered monocyte phenotypes, and low T-regs, with a direct association between peripheral and peritoneal T-regulatory cell measures; they also find stage-specific cytokine signals (peritoneal MCP-1 and MIP-1β for I–II, and IL-6 and IL-8 for III–IV) plus additional correlation patterns suggesting systemic immune imbalance and inflammation chronicity. The study’s main limitation is the relatively small sample size and cross-sectional, biomarker-discovery design without validation in independent cohorts. This paper is centrally about endometriosis — it focuses on immunological markers in peripheral blood and peritoneal fluid that distinguish endometriosis stage and prevalence.

Read from the paper's body, not the abstract. Not a substitute for reading the paper. No clinical advice. How this works

Abstract

I ntroduction. The innate immune system plays a leading role in the initiation and progression of external genital endometriosis (EGE) lesions. Aim. Тo analyze the content of subpopulations of immunocompetent cells and the level of cytokines in peripheral blood (PB) and peritoneal fluid (PF) to identify the most informative indicators as non-invasive markers of EGE and the degree of its prevalence. Mat erials and methods . Phenotyping of lymphocytes by flow cytometry and assessment of cytokine content by multiplex method (27-plex panel) were performed in women with EGE of I–II degree (n = 20) and III–IV degree of prevalence (n = 28) in the PB before surgery and in the PF intraoperatively. The comparison group included 19 women without EGE. Results. In the PB of women with EGE, regardless of the degree of prevalence of the process, an increase in the content of leukocytes, neutrophils, NF/LF index and a decrease in the content of lymphocytes, a change in the ratio of classical and intermediate monocytes, a low content of T-reg were found, a direct relationship was found between the content of T-regulatory cell subpopulations in the PB and in the PF. For the diagnosis of EGE of I-II degree of prevalence, the best parameters of significance were obtained for the content of MCP-1, MIP-1β in the PF, and for EGE of III-IV degree of prevalence – IL-6, IL-8. In the EGE I-II subgroup of patients, feedback was found between regulatory NK cells and cytokines, which may reflect an immune imbalance at the systemic level. In the EGE III-IV subgroup of patients, direct medium-strength connections were found between CD200+ cells and a wide range of cytokines, which reflects the chronicity of the inflammatory process. C onclusions. Prospects for further research into EGE of various degree of prevalence are associated precisely with the formation of panels of non-invasive markers.
Full text 9,882 characters · extracted from oa-doi-fallback · click to expand
Подходы к поиску иммунологических маркеров эндометриоза и степени его распространенности https://doi.org/10.21518/ms2025-261 Аннотация Введение. Врожденной иммунной системе принадлежит ведущая роль в инициировании и прогрессировании очагов наружного генитального эндометриоза (НГЭ). Цель. Провести анализ содержания субпопуляций иммунокомпетентных клеток и уровня цитокинов в периферической кро-ви (ПК) и перитонеальной жидкости (ПЖ) для выявления наиболее информативных показателей в качестве неинвазивных маркеров НГЭ и степени его распространенности. Материалы и методы. Фенотипирование лимфоцитов методом проточной цитометрии и оценку содержания цитокинов муль-типлексным методом (27-плексная панель) проводили у женщин с НГЭ I–II cтепени (n = 20) и III–IV cтепени распространения (n = 28) в ПК до хирургической операции и в ПЖ интраоперационно. Группа сравнения – 19 женщин с отсутствием НГЭ. Результаты. В ПК женщин с НГЭ, независимо от степени распространенности процесса, обнаружено увеличение содержания лейкоцитов, нейтрофилов, НФ-/ЛФ-индекса и снижение содержания лимфоцитов, изменение в соотношении классиче-ских и промежуточных моноцитов, низкое содержание T-рег, обнаружена прямая связь между содержанием в ПК и в ПЖ субпопуляций Т-регуляторных клеток (CD56+TCRγδ+, TCRγδ+, Т-рег с фенотипом CD4+CD25 +CD127low/-). Для диагностики НГЭ I–II степени распространенности были получены лучшие параметры значимости для содержания в ПЖ МСР-1, MIP-1β, а для НГЭ III–IV степени распространенности – ИЛ-6, ИЛ-8. В ПК пациенток подгруппы ЭМ-1 обнаружены обратные связи между регуляторными NK-клетками с цитокинами, что может отражать иммунный дисбаланс на системном уровне. В ПК пациенток подгруппы ЭМ-2 выявлены прямые связи средней силы CD200+-клеток с широким спектром цитокинов, что отражает хронизацию воспалительного процесса. Выводы. Перспективы дальнейших исследований НГЭ разных форм распространения связаны именно с формированием панелей неинвазивных маркеров. Ключевые слова Об авторах Л. В. КречетоваРоссия Кречетова Любовь Валентиновна, д.м.н., заведующая лабораторией клинической иммунологии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4 Т. Д. Короткова Россия Короткова Татьяна Денисовна, врач – акушер-гинеколог, аспирант отделения оперативной гинекологии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4 Е. B. Инвияева Россия Инвияева Евгения Владимировна, к.б.н., ведущий научный сотрудник лаборатории клинической иммунологии 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4 Л. В. Адамян Россия Адамян Лейла Владимировна, академик РАН, д.м.н., профессор, заведующая гинекологическим отделением, заместитель директора по научной работе 117997, Москва, ул. Академика Опарина, д. 4 Список литературы 1. Адамян ЛВ, Кулаков ВИ, Андреева ЕН. Эндометриозы. М.: Медицина; 2006. 410 с. 2. Horne AW, Saunders PTK. SnapShot: Endometriosis. Cell. 2019;179(7):1677–1677.e1. https://doi.org/10.1016/j.cell.2019.11.033. 3. Ahn SH, Singh V, Tayade C. Biomarkers in endometriosis: Challenges and opportunities. Fertil Steril. 2017;107(3):523–532. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2017.01.009. 4. Agarwal SK, Chapron C, Giudice LC, Laufer MR, Leyland N, Missmer SA et al. Clinical diagnosis of endometriosis: a call to action. Am J Obstet Gynecol. 2019;220(4):354.e1–354.e12. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2018.12.039. 5. Coutinho AJr, Bittencourt LK, Pires CE, Junqueira F, Lima CM, Coutinho E et al. MR imaging in deep pelvic endometriosis: a pictorial essay. Radiographics. 2011;31(2):549–567. https://doi.org/10.1148/rg.312105144. 6. Nisenblat V, Prentice L, Bossuyt PM, Farquhar C, Hull ML, Johnson N. Combination of the non-invasive tests for the diagnosis of endometriosis. Cochrane Database Syst Rev. 2016;7(7):CD012281. https://doi.org/10.1002/14651858.CD012281. 7. Wang Y, Nicholes K, Shih IM. The origin and pathogenesis of endometriosis. Annu Rev Pathol. 2020;15:71–95. https://doi.org/10.1146/annurev-pathmechdis-012419-032654. 8. As-Sanie S, Black R, Giudice LC, Valbrun TG, Gupta J, Jones B et al. Assessing research gaps and unmet needs in endometriosis Am J Obstet Gynecol. 2019;221(2):86–94. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2019.02.033. 9. Bazot M, Bharwani N, Huchon C, Kinkel K, Cunha T, Guerra A et al. European society of urogenital radiology (ESUR) guidelines: MR imaging of pelvic endometriosis. Eur Radiol. 2017;27(7):2765–2775. https://doi.org/10.1007/s00330-016-4673-z. 10. Chapron C, Querleu D, Bruhat M-A, Madelenat P, Fernandez H, Pierre I, Dubuisson J. Surgical complications of diagnostic and operative gynaecological laparoscopy: a series of 29,966 cases. Hum Reprod.1998;13(4):867–872. https://doi.org/10.1093/humrep/13.4.867. 11. Jansen FW, Kapiteyn K, Trimbos-Kemper T, Hermans J, Trimbos JB. Complications of laparoscopy: a prospective multicentre observational study. Br J Obstet Gynaecol. 1997;104(5):595–600. https://doi.org/10.1111/j.1471-0528.1997.tb11539.x. 12. Wickiewicz D, Chrobak A, Gmyrek GB, Halbersztadt A, Gabryś MS, Goluda M, Chełmońska-Soyta A. Diagnostic accuracy of interleukin-6 levels in peritoneal fluid for detection of endometriosis. Arch Gynecol Obstet. 2013;288(4):805–814. https://doi.org/10.1111/1471-0528.14711. 13. Hadfield R, Mardon H, Barlow D, Kennedy S. Delay in the diagnosis of endometriosis: a survey of women from the USA and the UK. Hum Reprod. 1996;11(4): 878–880. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.humrep.a019270. 14. Nnoaham KE, Hummelshoj L, Webster P, d’Hooghe T, de Cicco Nardone F, de Cicco Nardone C et al. Impact of endometriosis on quality of life and work productivity: a multicenter study across ten countries. Fertil Steril. 2011;96(2):366–373. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2011.05.090. 15. Hudelist G, Fritzer N, Thomas A, Niehues C, Oppelt P, Haas D et al. Diagnostic delay for endometriosis in Austria and Germany: causes and possible consequences. Hum Reprod. 2012;27(12):3412–3416. https://doi.org/10.1093/humrep/des316. 16. Zindel J, Kubes P. DAMPs, PAMPs, and LAMPs in Immunity and Sterile Inflammation. Annu Rev Pathol. 2020;15:493–518. https://doi.org/10.1146/annurev-pathmechdis-012419-032847. 17. Lukács L, Kovács AR, Pál L, Szűcs S, Kövér Á, Lampé R. Phagocyte function of peripheral neutrophil granulocytes and monocytes in endometriosis before and after surgery. J Gynecol Obstet Hum Reprod. 2021;50(4):101796. https://doi.org/10.1016/j.jogoh.2020.101796. 18. Короткова ТД, Кречетова ЛВ, Инвияева ЕВ, Вторушина ВВ, Ванько ЛВ, Адамян ЛВ. Фенотипическая характеристика субпопуляций клеток врожденного иммунитета в периферической крови женщин с эндометриозом до и после хирургического лечения. Акушерство и гинекология. 2021;(10):93–102. https://doi.org/10.18565/aig.2021.10.93-102. 19. Westman J, Grinstein S, Marques PE. Phagocytosis of Necrotic Debris at Sites of Injury and Inflammation. Front Immunol. 2020;10:3030. https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.03030. 20. Овакимян АС, Кречетова ЛВ, Вторушина ВВ, Ванько ЛВ, Козаченко ИФ, Яроцкая ЕЛ, Адамян ЛВ. Содержание IL-1β, IL-8 и субстанции Р в плазме крови и перитонеальной жидкости пациенток с различными формами наружного генитального эндометриоза и хронической тазовой болью. Акушерство и гинекология. 2015;(3):79–86. Режим доступа: https://aig-journal.ru/archive/9512. 21. Павлович СВ, Кречетова ЛВ, Вторушина ВВ, Ванько ЛВ, Юшина МН, Савилова АМ и др. Особенности профиля секретируемых белков клетками из эндометриоидных очагов и эуктопического эндометрия женщин с наружным генитальным эндометриозом в культуре in vitro. Акушерство и гинекология. 2019;(8):90–99. https://doi.org/10.18565/aig.2019.8.90-99. 22. Калашникова АА, Ворошилова ТМ, Чинонова ЛВ, Давыдова НИ, Калинина НМ. Субпопуляции могоцитов у здоровых лиц и у пациентов с сепсисом. Медицинская иммунология. 2018;20(6):815–824. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2018-6-815-824. 23. Ginhoux F, Jung S. Monocytes and macrophages: developmental pathways and tissue homeostasis. Nat Rev Immunol. 2014;14(6):392–404. https://doi.org/10.1038/nri3671. 24. Сельков СА, Ярмолинская МИ. Эндометриоз как патология регуляторных механизмов. Журнал акушерства и женских болезней. 2017;66(2):9–13. https://doi.org/10.17816/JOWD6629-13. 25. Prat M, Le Naour A, Coulson K, Lemée F, Leray H, Jacquemin G et al. Circulating CD14high CD16low intermediate blood monocytes as a biomarker of ascites immune status and ovarian cancer progression. J Immunother Cancer. 2020;8(1):e000472. https://doi.org/10.1136/jitc-2019-000472. 26. Кречетова ЛВ, Инвияева ЕВ, Короткова ТД, Ванько ЛВ, Адамян ЛВ. Роль системного и локального иммунитета в патогенезе эндометриоза разной степени распространенности процесса: современный взгляд. Проблемы репродукции. 2024;30(5):6–4 https://doi.org/10.17116/repro2024300516. 27. Borrelli GM, Kaufmann AM, Abrão MS, Mechsner S. Addition of MCP-1 and MIP-3β to the IL-8 appraisal in peritoneal fluid enhances the probability of identifying women with endometriosis. J Reprod Immunol. 2015;109:66–73. https://doi.org/10.1016/j.jri.2015.01.003. 28. Toshio H. IL-6 in inflammation, autoimmunity and cancer. Int Immunol. 2021;33(3):127–148. https://doi.org/10.1093/intimm/dxaa078. 29. Burns KA, Thomas SY, Hamilton KJ, Young SL, Cook DN, Korach KS. Early Endometriosis in Females Is Directed by Immune-Mediated Estrogen Receptor α and IL-6 Cross-Talk. Endocrinology. 2018;159(1):103–118. https://doi.org/10.1210/en.2017-00562. Рецензия Для цитирования: Кречетова ЛВ, Короткова ТД, Инвияева ЕB, Адамян ЛВ. Подходы к поиску иммунологических маркеров эндометриоза и степени его распространенности. Медицинский Совет. 2025;19(13):227-235. https://doi.org/10.21518/ms2025-261 For citation: Krechetova LV, Korotkova TD, Inviyaeva EV, Adamyan LV. Approaches to the search for immunological markers of endometriosis and the degree of its prevalence. Meditsinskiy sovet = Medical Council. 2025;19(13):227-235. (In Russ.) https://doi.org/10.21518/ms2025-261 JATS XML

Text is read by the "Ask this paper" AI Q&A widget below. Extraction quality varies by source — PMC NXML preserves structure cleanly, OA-HTML may include some navigation residue, and OA-PDF can have broken hyphenation. The publisher copy (via DOI) is the canonical version.

My notes (saved in your browser only)

⚙ Ask this paper AI returns verbatim quotes from the full text · source: oa-doi-fallback ⓘ

Answers must be backed by verbatim quotes from this paper's full text. Hallucinated quotes are dropped automatically; if no verbatim passage answers the question, we say so. How this works

Condition tags

endometriosis

Citation neighborhood

Papers in the corpus that this work cites (lower rings, blue) and that cite this one (upper rings, green). Dot size scales with the paper's in-corpus citation count — bigger dot = more influential within the endo/adeno field. Click a dot to open that paper. [ expand to 2 hops ] — adds papers reached through this work's immediate citers/citees. Heavier; up to 60 extra dots.

References (28)

Cited by (1)

Source provenance

openalex
last seen: 2026-06-10T17:14:06.276822+00:00
License: CC0 · commercial use OK