Methods
light microscopy, immunohistochemistry, PCR-RT. Results: The number of neuroendocrine cells (increased
NSE expression) was higher in the II group in patients with pain syndrome by almost 2 times (28.7±3.1 %) compared
to group I without pain syndrome (15.6±2.4 %). Expression of S100: Group I – 0.11±0.09, Group II – 0.36±0.11.
Expression of PGP 9.5: Group I – 0.8±0.21; Group II – 1.26±0.01. Expression of TAC1, TRPV1, SCN9A, SCN11A
in endometrioid cyst samples was significantly higher than the threshold level (p<0.05). Expression of TRPA1 and
P2RX3 differed insignificantly compared with the control. Conclusion: an increase in the number of neuroendocrine
cells in the focus of neuroimmunogenic inflammation in endometrioid ovarian cysts is one of the key triggers in the
pathogenesis of endometriosis-associated pelvic pain. NSE should be considered as a promising marker of genital
endometriosis.
Key words: genital endometriosis, NSE, S100, PGP 9.5, chronic pelvic pain
446446
original research
morphology
Оригинальные исследОвания
Морфология
Э
ндометриоз – хроническое, доброкаче-
ственное, эстроген-зависимое, мультифак-
ториальное гинекологическое заболевание,
при котором за пределами матки происходит
разрастание элементов дифферонов эндоме-
трия, в частности клеток железистого эпителия,
образующего маточные железы, и соответствую-
щих клеток стромы [1, 3, 4, 11, 18]. Эндометриоз
обнаруживают у 10–15 % женщин репродуктив-
ного возраста с пиком в интервале от 25 до 35 лет
[2, 3, 11, 18].
В зависимости от локализации различают ге -
нитальный (внутренний и наружный) и экстраге -
нитальный типы эндометриоза [1, 4]. Первый тип
характеризуется наличием очагов поражения в
пределах половых органов, в частности в яичниках
с образованием эндометриоидных кист – наиболее
часто встречающаяся форма генитального эндо
-
метриоза, также называемая «шоколадная киста»
[1, 3, 4]. При этом самым распространенным и в то
же время специфическим симптомом является эн
-
дометриоз-ассоциированная хроническая тазовая
боль (ХТБ), патогенез которой, как и механизм раз
-
вития овариального эндометриоза в целом, остает-
ся неясным и требует дальнейшего изучения. При
этом одним из ключевых механизмов развития ХТБ
являются регенерация и миелинизация нервных во
-
локон в очаге эндометриоидного поражения [6, 10,
11, 16] со специфическими провоспалительными
изменениями [9, 15].
Несмотря на то что достоверно установлена вза-
имосвязь между плотностью нервных волокон и ней-
рогенным воспалением, остаются малоизученными
специфические регуляторы активации роста этих во-
локон в зоне эндометриоидного поражения при дей-
ствии воспалительных факторов [9, 13].
Детальное изучение типовых процессов иннер-
вации в местах эндометриоидных очагов стало воз-
можным с применением некоторых специфиче-
ских функциональных маркеров. Белок Protein Gene
Product 9.5 (PGP 9.5) является высокоспецифичным
пан-нейрональным маркером. Так, обнаружение это-
го белка указывает на наличие миелиновых и безми-
елиновых нервных волокон [16]. Выявление группы
кальций-связывающих белков S100 нейроэктодер-
мальной природы необходимо для верификации от-
дельных миелиновых волокон, в том числе леммоци-
тов [9, 13].
Рост нервных волокон напрямую связан с изме-
нением экспрессии ключевых генов, ответственных
за ноцицептивную чувствительность [12]. К таким
продуктам экспрессии относятся катионные кана-
лы с транзиторным рецепторным потенциалом (TRP
channels), в частности TRPA1 (анкириновые) и TRPV1
(ванилоидные). Эти каналы необходимы для форми-
рования гиперчувствительности к тепловым и меха-
ническим раздражителям в условиях хронического
воспаления. Выявленное повышение уровня имму-
нореактивности TRPV1 в эндометриоидных очагах
сопровождается синдромом ХТБ [7]. Другие гены, ко-
дирующие потенциал-зависимые натриевые каналы
SCN9A, SCN11A, также влияют на ноцицепцию, обе-
спечивая более активный ответ на раздражитель при
ряде болевых состояний воспалительного характера
[12]. Считается, что развитие механической гиперал-
гезии путем метаботропного ответа на выделяющий-
ся из окружающих клеток АТФ в условиях воспаления
связано с семейством потенциал-зависимых пури-
нергических рецепторов P2X [17]. Не менее важным
геном-регулятором ноцицепции является ТAC1, кото-
рый кодирует субстанцию P и осуществляет переда-
чу болевого сигнала в центральной нервной системе
(ЦНС) [12].
Несмотря на наличие множества белков-участ-
ников ХТБ, остается малоизученной роль нейроэн-
докринного компонента. Существует предположе-
ние, что выделяемые нейроэндокринными клетками
биогенные амины и пептидные гормоны участвуют в
патогенезе ХТБ. Для обнаружения нейроэндокрино-
цитов используют специфический маркер – нейрон-
специфическая енолаза (NSE) [20].
Цель исследования: изучение нейроэндокринного
компонента воспаления при генитальном эндометри-
озе, сопровождаемого болевым синдромом.
Материал и методы. Выборочную совокупность
составили женщины в возрасте 35±5 лет (n=42). Кри-
терием включения в исследование было наличие эн-
дометриоидной кисты яичника. Пациентки были ран-
домизированы на 2 группы. Первая группа включила
11 человек с бесплодием и наружным генитальным
эндометриозом (НГЭ) без тазовой боли. Вторая груп-
па – 31 пациентку с наружным генитальным эндоме-
триозом, выраженным тазовым болевым синдромом,
не получавших предварительно гормональной тера-
пии.
Всем пациенткам было выполнено оперативное
лечение в объеме лапароскопической цистэктомии
и/или резекции яичника, а также аспирационная би-
опсия эндометрия. Материалом для исследования
были капсула эндометриоидной кисты, прилежащие к
ней ткани яичника и аспират эндометрия. Исследова-
ние проводилось методами световой микроскопии,
иммуногистохимии и ПЦР-диагностики.
Морфологическое исследование. Для гистоло-
гического исследования фрагментов стенок эндо-
метриоидных кист использовали стандартный метод
(фиксация формалином, заливка в парафин, окраска
гематоксилином и эозином).
ИГХ-исследование проводили по стандартному
протоколу в автоматическом режиме в иммуногисто-
стейнере Bond-Max («Leica», Германия). Первичные
антитела (в готовом к использованию разведении), их
классы Ig и клоны приведены в таблице. Вторичные
антитела (антимышиные) – кроличьи Cell Marque. Для
каждого маркёра выполнялись контрольные исследо-
вания с целью исключения псевдопозитивных и псев-
донегативных результатов. Ядра клеток докрашивали
гематоксилином Mayer. Интенсивность окрашивания
срезов оценивали согласно рекомендациям [4, 8]
(ve): «–» – отсутствие экспрессии; «+» – слабая экс-
прессия (1–10 % клеток); «++» – умеренная экспрес-
сия (11–50 % клеток); «+++» – выраженная экспрессия
(высокоинтенсивная иммунопероксидазная реакция,
≥51 % клеток).
Полимеразная цепная реакция в режиме реаль-
ного времени (ПЦР-РВ). Исследование фрагментов
эндометриоидных кист и биоптатов эндометрия про-
водили согласно стандартному протоколу (стаби-
лизация, гомогенизация, экстракция РНК, синтез и
выделение кДНК). Нормирование выполнено относи-
тельно референсных генов домашнего хозяйства 18S,
B2M, GAPDH. Гены и последовательность праймеров:
TRPA1, forward, 5′-tggacaccttcttcttgcatt-3′, reverse,
5 ′-tcatccatttcatgcagcac-3′ ; TRPV1, forward, 5′ -agagtcacg-
ctggcaacc-3′, reverse, 5′-ggcagagactctccatcacac-3′;
SCN9A, forward, 5′-caacttttaagggatggacga-3′, reverse,
МЕДИЦИНСКИЙ ВЕСТНИК СЕВЕРНОГО КАВКАЗА
2017. Т. 12. № 4
Medical news of north caucasus
2017. Vоl. 12. Iss. 4
447447
Таблица
Иммуногистохимическая реакция (используемые антитела)
Антитела
(фирменное название)
Клон, Ig класс,
фирма, разведение Специфичность и характеристика
БЕЛКИ КОМПОНЕНТОВ НЕРВНОЙ ТКАНИ
Mouse Monoclonal Antibody
Neurospecific Enolase (NSE)
Clone MRQ-55, IgG2b
Cell Marque
Цитоплазматический маркер. В норме: тело нейро-
на, нейроэндокринные клетки
Mouse Monoclonal Antibody
S100 Protein
Clone EP186, IgG1
Bio SB
Цитоплазматический маркер. В норме: клетки, про-
изводные ганглиозной пластинки (шванновские
клетки, меланоциты и т. д.)
Mouse Monoclonal Antibody
Protein Gene Product 9.5
(PGP 9.5)
Clone BSB-46, Ig2b
Bio SB
Цитоплазматический маркер. В норме: нейроны, ми-
елиновые и безмиелиновые нервные волокна ЦНС
и ПНС
ФАКТОРЫ ВОСПАЛЕНИЯ
Mouse Monoclonal Antibody
CD10
Clone 56C6, IgG1
Novocastra
TM
Трансмембранный маркер. В норме: предшествен -
ники В-лимфоцитов; миоэпителиоциты протоков мо-
лочных желез и желчных канальцев, микроворсинки
эпителия проксимального отдела нефрона
Mouse Monoclonal Antibody
IL-1β
Clone E7-2-hIL1β, IgG2b
Santa Cruz
Biotechnology, Inc
Цитоплазматический маркер. Продуцируется акти-
вированными макрофагами. Провоспалительный
цитокин способствует активации лимфоцитов и их
делению
РЕЦЕПТОРЫ ЖЕНСКИХ ПОЛОВЫХ ГОРМОНОВ
Mouse Monoclonal
Antibody
Estrogen receptor (ER)
Clone 6F11, IgG1
Novocastra
TM
Ядерный маркер. В норме: клетки эндометрия, яич-
ника и миометрия, а также клетки протоков мо-
лочных желез. Клетки-мишени: матка, влагалище,
мочеиспускательный канал, молочные железы, пе-
чень, гипоталамус, гипофиз
Mouse Monoclonal Antibody
Progesterone receptor
(PRG)
Clone 16, SAN27, IgG1
Novocastra
TM
Ядерный маркер. В норме: клетки эндометрия, яич-
ника и миометрия, а также клетки протоков мо-
лочных желез. Клетки-мишени: матка, влагалище,
мочеиспускательный канал, молочные железы, пе-
чень, гипоталамус, гипофиз
Примечание. ПНС – периферическая нервная система.
Результаты. Микроскопическое описание эн -
дометриоидных кист яичников I и II групп. Кисты вы -
стланы кубическим эпителием с единичными рес -
нитчатыми клетками; имеются частицы сплющенных
эндометриоидных желез, а также отложения гема -
тина и гемосидерина (локальный экстравазальный
гемосидероз). Индекс васкуляризации высокий
(рис. 1).
Данные иммуногистохимического исследования.
В группе пациенток с болевым синдромом отмечает-
ся стабильно высокая («ve+/3») положительная реак-
ция на антитела к NSE в эпителиальной выстилке эн-
дометриоидных желез, а также в нейроэндокринных
клетках, которые лежат маленькими группами, со-
провождая аденоматозный компонент и кровеносные
сосуды. Мелкодисперсные гранулы визуализируются
в нейроэндокринных клетках, образующих островки в
интерстициальной ткани («ve+/2»). Средний уровень
цитоплазматической иммунной реакции с антите-
лами на NSE присутствует в эпителии эндометрио-
идных желез и нейроэндокринных клеток в группе с
безболевым синдромом
(рис. 1) . S100 в биоптатах
II группы демонстрирует положительную реакцию в
леммоцитах миелиновых нервных волокон («ve+/3»),
тогда как в леммоцитах и мантийных клетках нервных
волокон I группы уровень иммунной реакции снижен
(«ve+/2»). Следует отметить разницу в плотности за-
нимаемого волокнами ареала (в разных полях зрения
при одинаковом увеличении микроскопа), а также
в толщине нервных волокон: у пациенток II группы в
эндометриоидных кистах эти показатели в два раза
выше по сравнению с аналогичными показателя-
ми у пациенток I группы. На увеличение плотности
на единицу площади, занимаемой миелиновыми и
5′-tcatatttgggctgcttgtct-3′; SCN11A, forward, 5′-acctgag-
cctgaacaacagg-3′, reverse, 5′-tttgaactctctggctcgtg-3′;
P2RX3, forward, 5′-ggcctttacttctgtgggagt-3′, reverse,
5′-aaacttcttggctttgtactggtc-3′; TAC1, forward, 5′-gcctcag-
cagttctttggat-3′, reverse, 5′-agcctttaacagggccactt-3′.
Полученные результаты статистически обрабаты-
вали с использованием программного пакета SPSS
7.5 for Windows (IBM Analytics, США). Рассчитывали
среднеарифметические и среднеквадратичные от-
клонения. Количественные данные, полученные в
ходе ПЦР-РВ, были проанализированы с использова-
нием рангового дисперсионного анализа ANOVA. Для
сравнения двух выборок использовали t-критерий с
уровнем значимости p<0,05.
448448
original research
morphology
Оригинальные исследОвания
Морфология
Окрас-
ка
ГРУППЫ Аспират из полости
матки (контроль)I (Безболевой синдром) II (Болевой синдром)
гематоксилин-эозин
×20
×20
×20
NSE
×20
×40
×20
S100
×20
×20
×40
PGP 9.5
×20
×40
×20
CD10
×20
×20
×20
Рис. 1. Эндометриоидные кисты яичников (n=42). Окраска: гематоксилин и эозин; иммуногистохимические реакции
с антителами к NSE, S100, PGP 9.5 и CD10, докрашивание – гематоксилином
МЕДИЦИНСКИЙ ВЕСТНИК СЕВЕРНОГО КАВКАЗА
2017. Т. 12. № 4
Medical news of north caucasus
2017. Vоl. 12. Iss. 4
449449
безмиелиновыми волокнами, также указывает пан-
нейрональный маркер PGP 9.5. Тем не менее имму-
номечение в исследуемых группах определяется как
«ve+/3». Положительная реакция на СD10 в обеих
группах («ve+/3») доказывает эндометриоидную при-
роду происхождения кист яичника, а также указывает
на миграции лимфоидных элементов в очаг локаль-
ного воспаления. Провоспалительный цитокин IL-1β
демонстрирует высокую реакцию в эпителии эндоме-
триоидных кист у пациенток II группы по сравнению
с I группой. Эндокринная функция в обеих группах в
пределах возрастной физиологической нормы, что
подтверждается положительной нуклеарной реакци-
ей с антителами к рецепторам эстрогенов и проге-
стеронов («ve+/3»).
Статистические данные позволяют утверждать,
что количество нейроэндокринных клеток с положи-
тельной реакцией с антителами к NSE выше у пациен-
ток с болевым синдромом почти в 2 раза (28,7±3,1 %)
по сравнению с I группой (15,6±2,4 %). Анализ уров-
ня экспрессии S100 в миелиновых нервных волокнах
(леммоцитах) и их плотности (волокна/мм
2 ) в выбо-
рочной совокупности указывает на неоднородность
по данному признаку (p<0,05) в исследуемых груп-
пах: I группа – 0,11±0,09; II группа – 0,36±0,11. При
этом общая плотность миелиновых и безмиелиновых
нервных волокон (ИГХ-реакция с PGP 9,5) в груп-
пах имеет следующие значения: I группа – 0,8±0,21;
II группа – 1,26±0,01.
Анализ экспрессии генов посредством ПЦР-РВ.
В ходе оценки уровня экспрессии генов ноципетивных
ионных каналов и TAC1 с помощью измерения коли
-
чества мРНК соответствующих генов во фрагментах
эндометриоидных кист и эутопического (контроль)
эндометрия были выявлены существенные статисти
-
ческие различия между исследуемыми образцами.
Экспрессия TAC1, TRPV1, SCN9A, SCN11A в образцах
эндометриоидной кисты значительно и достоверно
превышала пороговый уровень контроля (р<0,05).
В это же время экспрессия TRPA1
и P2RX3 отличалась незначитель -
но по сравнению с контролем.
Обсуждение. Результаты
данного исследования позволили
определить новую патогенети
-
ческую концепцию формирова -
ния тазового болевого синдрома
у женщин с НГЭ (с эндометри
-
оидными кистами яичников).
Учитывая тот факт, что нейро -
эндокринные клетки являются
многофункциональными медиа
-
торами, регулирующими функци -
ональную активность различных
органов [4, 5, 13, 19], локальное
увеличение количества нейроэн
-
докриноцитов в участке эндоме -
триоидного поражения (высокий
уровень экспрессии NSE) при
ХТБ способствует секреции боль
-
шего количества биологически
активных веществ, в том числе
различных провоспалительных
медиаторов, нейтрофинов, нейропептидов и др. [2,
5]. Опосредованно, через активные хемоаттрактан
-
ты нейроэндокринные клетки способствуют повы -
шению миграции макрофагов и других элементов
воспаления. Наряду с этим происходит стимуляция
роста и ветвления нервных волокон. Тем самым уси
-
ливается нейроиммуногенное воспаление в очаге
эндометриоидного поражения с развитием гипер -
чувствительности и гипералгезии, что в итоге при-
водит к появлению болевого синдрома. Таким обра -
зом, нейроэндокринные клетки являются одним из
триггеров в патогенезе ХТБ при эндометриоидных
кистах яичника.
Обнаруженные PGP 9.5- и S100-ИГХ-позитивные
нервные волокна в интерстициальной ткани яичника
с эндометриоидным поражением свидетельствуют
о выраженном разрастании миелиновых и безми
-
елиновых нервных волокон у женщин, страдающих
эндометриозом, и их способности иннервировать не
только здоровые ткани яичника, но и ткани эндоме
-
триоидной кисты [9, 10]. Результаты статистического
анализа также показывают высокую степень корре
-
ляции между плотностью выявленных нервных воло-
кон и присутствием болевого синдрома у женщин с
эндометриоидными кистами яичников. В эпителии
эктопического эндометрия наблюдается стабильно
высокий уровень провоспалительного цитокина IL-1β
и CD10 с присутствием прогестероновых и эстроге
-
новых рецепторов в клетках покровного эпителия и
маточных желез, что свидетельствует о нейрогенном
воспалении в очагах поражения.
На основании проведенного ретроспективно -
го исследования можно утверждать, что выражен -
ный рост нервных волокон в очагах эндометриоза
у женщин, страдающих ХТБ, зависит от активности
цитокинов и факторов роста, обусловливающих ло -
кальное воспаление на фоне гормонального статуса
пациенток.
Так, на основании проведенного анализа (ПЦР-
РВ) экспрессии генов [19], ответственных за ноци-
цепцию и проведение сигнала в ЦНС, можно считать,
что патогенез ХТБ связан с развитием гиперчувстви-
тельности и гипералгезии на фоне развившегося
нейроиммуногенного воспаления (рис. 2).
Заключение. Увеличение количества нейроэн-
докринных клеток в очаге нейроиммунного воспале-
ния при эндометриоидных кистах яичника является
одним из ключевых триггеров в патогенезе эндомет-
риоз-ассоциированных тазовых болей.
Рис. 2. Роль нейроэндокринных клеток в патогенезе хронических тазовых болей
при наружном генитальном эндометриозе
450450
original research
morphology
Оригинальные исследОвания
Морфология
Литература
1. Адамян, Л. В. Генитальный эндометриоз. Современ-
ный взгляд на проблему / Л. В. Адамян, С. А. Гаспа-
рян. – Ставрополь, 2004. – С. 228.
2. Боровая, Т. Г. Источники и возрастные особенности
эндометриоидных кист / Т. Г. Боровая // Морфоло-
гия. – 2016. – № 3. – С. 41.
3. Демяшкин, Г. А. Иммуногистохимическая характе-
ристика эндометриоза стенки кишки / Г. А. Демяш-
кин, И. М. Терлоев, М. Н. Касанова, Я. С. Борисов //
Крымский журнал экспериментальной и клинической
медицины. – 2017. – № 7 (4). – С. 40–45.
4. Борисова, А. В. Сравнительный анализ липидного
состава перитонеальной жидкости и плазмы крови
у пациенток с наружным генитальным эндометрио-
зом и миомой матки / А. В. Борисова, В. В. Чаговец,
А. В. Козаченко [и др.] // Акушерство и гинеколо-
гия. – 2017. – № 6 – С. 74–82.
5. Телегина, И. В. Особенности репарации раны на
матке после операции кесарева сечения / И. В. Теле-
гина, И. Г. Нежданов, Р. В. Павлов [и др.] // Меди-
цинский вестник Северного Кавказа. – 2013. – Т. 8,
№ 2. – С. 89–92.
6. Arnold, J. Neuroimmunomodulatory alterations in non-
lesional peritoneum close to peritoneal endometriosis /
J. Arnold, G. F. Vercellino, V. Chiantera [et al.] //
Neuroimmunomodulation. – 2013. – 20(1). – P. 9–18.
7. Basbaum, A. I. Cellular and Molecular Mechanisms
of Pain / A. I. Basbaum, D. M. Bautista, G. Scherrer,
D. Julius // Cell. – 2009. – Vol. 139. – P. 267–284.
8. Dabbs, D. J. Diagnostic immunohistochemistry. Forth
edition / D. J. Dabbs. – Philadelphia, PA: Elsevier/
Saunders, 2014. – 960 р.
9. Donato, R. Functions of S100 Proteins / R. Donato,
B. Cannon, G. Sorci, F. Riuzzi [et al.] // Curr. Mol. Med. –
2012. – Vol. 13. – P. 24–57.
10. Greaves, E. Elevated peritoneal expression and estrogen
regulation of nociceptive ion channels in endometriosis /
E. Greaves, K. Grieve, A. W. Horne, P. T. Saunders //
J. Clin. Endocrinol. Metab. – 2014. – Vol. 99. – P. E1738–
1743.
11. Joseph, E. K. Vascular Endothelial Cells Mediate
Mechanical Stimulation-Induced Enhancement of
Endothelin Hyperalgesia via Activation of P2X2/3
Receptors on Nociceptors / E. K. Joseph, P. G. Green,
O. Bogen [et al.] // J. Neurosc. – 2013. – Vol. 33. –
P. 2849–2859.
12. Markham, S. M. Extrapelvic endometriosis / S. M. Mark-
ham, S. E. Carpenter, J. A. Rock // Obstet. Gynecol. Clin.
North Am. – 1989. – Vol. 16. – P. 193–219.
13. Miller, E. J. The importance of pelvic nerve fibers in
endometriosis / E. J. Miller, I. S. Fraser // Women’s
health. – 2015. – Vol. 11, № 5. – P. 611–618.
14. Missmer, S. A. The epidemiology of endometriosis /
S. A. Missmer, D. W. Cramer // Obstet. Gynecol. Clin.
North Am. – 2003. – Vol. 30. – P. 1–19.
15. Morotti, M. Peripheral changes in endometriosis-
associated pain / M. Morotti, K. Vincent, J. Brawn
[et al.] // Hum. Reprod. Update. – 2014. – Vol. 20. –
P. 717–736.
16. Poli-Neto, O. B. Increased capsaicin receptor TRPV1
in the peritoneum of women with chronic pelvic pain /
O. B. Poli-Neto, A. A. Filho, J. C. Rosa e Silva [et al.] //
Clin. J. Pain. – 2009. – Vol. 25. – P. 218–222.
17. Tokushige, N. Nerve fibers in ovarian endometriomas /
N. Tokushige, R. Markham, P. Russell, I. S. Fraser //
Fertil Steril. – 2010. – Vol. 94 (5). – P. 1944–1947.
18. Vercellini, P. Endometriosis: pathogenesis and
treatment / P. Vercellini, P. Vigan
ò, E. Somigliana,
L. Fedele // Nature Rev. Endocrinol. – 2014. – Vol. 10 (5). –
P. 261–275.
19. Vigan ò, P. Endometriosis: epidemiology and aetiological
factors / P. Vigan ò, F. Parazzini, E. Somigliana,
P. Vercellini // Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. –
2004. – Vol. 18. – P. 177–200.
20. Wang, G. Neuroendocrine cells in eutopic endometrium
of women with endometriosis / G. Wang, N. Tokushige,
P. Russell [et al.] // Hum. Reprod. – 2010. – Vol. 25. –
P. 287–291.
21. Zhang, X. Nerve fibres in ovarian endometriotic lesions
in women with ovarian endometriosis / X. Zhang, H. Yao,
X. Huang [et al.] // Hum. Reprod. – 2010. – Vol. 25. –
P. 392–397.
References
1. Adamyan L. V., Genital endometriosis. A modern view of
the problem. Stavropol. 2006.
2. Borovaya T. G. Morfologiya. – Morphology. 2016;3:41.
3. Demyashkin G. A., Terloyev I. M., Kasanova M. N., Bori-
sov I. S. Krymskij zhurnal jeksperimental’noj i klinicheskoj
mediciny. – Crimean Journal of Experimental and
Clinical Medicine. 2017;7(4):40-45.
4. Borisova A. V., Chagovets V. V., Kozachenko A. V.,
Starodubtseva N. L., Kononikhin A. S., Salimova D. F.,
Kogan E. A., Adamyan L. V., Frankevich V. E., Suk-
hikh G. T. Akusherstvo i ginekologiya. – Obstetrics and
gynecology. 2017;6:74-82.
5. Telegina I., Nezhdanov I., Pavlov R., Aksenenko V.,
Demyashkin G. Meditsinskii vestnik Severnogo
Kavkaza. – Medical News of the North Caucasus.
2013;8(2):89-92.
6. Arnold J., Arnold J., Vercellino G. F., Chiantera V.,
Schneider A., Mechsner S. Neuroimmunomodulation.
2013;20(1):9-18.
7. Basbaum A. I., Bautista D. M., Scherrer G., Julius D. Cell.
2009;139:267-284.
8. Dabbs D. J. Diagnostic immunohistochemistry. Forth
edition. Philadelphia, PA: Elsevier/Saunders. 2014.
9. Donato R., Cannon B., Sorci G., Riuzzi F., Hsu K., We-
ber D., Geczy C. Curr. Mol. Med. 2012;13:24-57.
10. Greaves E., Grieve K., Horne A. W., Saunders P. T. J.
Clin. Endocrinol. Metab. 2014;99:E1738-1743.
11. Joseph E. K., Green P. G., Bogen O., Alvarez P., Levi-
ne J. D. J. Neuroscience. 2013;33:2849-2859.
12. Markham S. M., Carpenter S. E., Rock J. A. Obstet.
Gynecol. Clin. North Am. 1989;16:193-219.
13. Miller E. J., Fraser I. S. Women’s health. 2015;11(5):611-
618.
14. Missmer S. A., Cramer D. W. Obstet. Gynecol. Clin.
North Am. 2003;30:1-19.
15. Morotti M., Vincent K., Brawn J., Zondervan K. T., Bec-
ker C. M. Hum. Reprod. Update. 2014;20:717-736.
16. Poli-Neto O. B., Filho A. A., Rosa e Silva J. C., Barbo-
sa H. F., Candido Dos Reis F. J., Nogueira A. A. Clin. J.
Pain. 2009;25:218-222.
17. Tokushige N., Markham R., Russell P., Fraser I. S. Fertil
Steril. 2010; 94(5):1944-1947.
18. Vercellini P., Vigan
ò P., Somigliana E., Fedele L. Nature
Rev. Endocrinol. 2014;10(5):261-275.
19. Vigan ò P., Parazzini F., Somigliana E., Vercellini P. Best.
Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2004;18:177-200.
20. Wang G., Tokushige N., Russell P., Dubinovsky S.,
Markham R., Fraser I. S. Hum. Reprod. 2010;25:287-
291.
21. Zhang X., Yao H., Huang X., Lu B., Xu H., Zhou C.
Hum. Reprod. 2010;25:392-397.
Сведения об авторах:
Демяшкин Григорий Александрович, врач-патологоанатом, старший преподаватель кафедры патологической анатомии;
тел.: 89262755302; е-mail:
[email protected]
Оразов Мекан Рахимбердыевич, доктор медицинских наук, профессор кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии;
тел.: 89152375292; е-mail:
[email protected]
Закирова Яна Рявхатевна, аспирант кафедры акушерства и гинекологии с курсом перинатологии;
тел.: 89060931028; е-mail:
[email protected]
Жарков Николай Владимирович, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник;
тел.: 89653368683; е-mail:
[email protected]
Батов Максим Александрович, студент 6 курса; тел.: 89261024871; е-mail:
[email protected]
Борисов Ярослав Сергеевич, студент 6 курса; тел.: 89175500946; е-mail:
[email protected]